产品介绍ProfeLipo2000 Transfection Reagent
产品货号：L2000
产品规格：0.75ml 1.5ml
保存温度：2-4℃保存一年。（避免冷冻）
产品说明
ProfeLipo2000是一种新型的阳离子脂质体转染试剂。适合于将核酸(DNA和RNA)转染入真核细胞，具有低细胞毒性；对多种类型的细胞和培养板都具有高转染效率；转染时血清的存在不影响转染效率的优点。转染试剂在基因治疗中发挥着关键作用。用于将外源基因导入到目标细胞中。这些试剂经过精心优化以确保基因能够准确地定位到细胞内的特定位置，并稳定地表达所需的蛋白质。通过转染试剂的帮助，科学家们能够更有效地进行基因转移，从而加速基因治疗技术的发展和应用。在基因治疗领域，转染试剂的不断创新和优化，为治疗遗传性疾病、癌症等疾病提供了新的希望和可能。
适用范围：贴壁细胞和悬浮细胞（哺乳动物细胞系）的转染。
产品用途：
质粒DNA的转染 (每次转染一定要进行预实验，来摸索最佳条件, 尤其是转染试剂的最佳用量!)
对大多数细胞来说，DNA(µg)与ProfeLipo2000 (µl)的比例为1:2~1:3。转染时高的细胞密度可以得到高的转染效率和表达水平，并能减少细胞毒性。
1. 以24孔板为例
贴壁细胞： 转染前一天，用500 µl不含抗生素的培养基接种0.5～2×105细胞，使之第二天细胞融合度达到90%最合适。（融合度100%过高，培养基很快发黄，影响转染效率）
悬浮细胞：在准备DNA-ProfeLipo2000复合物之前，用500 µl不含抗生素的培养基接种4～8×105细胞即可。
*在转染前1小时，换37℃预热过不含双抗的完培800ul/孔（通常含FBS 5% ，此处血清不影响转染效率。但未预热的培养基会影响转染效率）。
2. 对每个转染样品，进行以下操作
a. 在Eppendorf管里分别加入50 µl Opti-MEM I Reclipped Serum Medium和0.8 µg DNA轻柔混匀，制成DNA稀释液。
b. 在另一个Eppendorf管里分别加入50µl Opti-MEMI Reclipped Serum Medium和1.5～2.0 µl ProfeLipo2000(注意用前先混匀)，轻柔混匀，制 成ProfeLipo2000 稀释液，室温静置5分钟。
c. 将DNA稀释液和ProfeLipo2000稀释液混合，轻柔混匀，室温静置20分钟， 形成DNA-ProfeLipo2000复合物。DNA-ProfeLipo2000复合物在室温下可稳定存在6小时。
3. 将DNA-ProfeLipo2000复合物加入到接种好的细胞中，将培养板轻轻地前后摇动，使复合物分散均匀。
4. 在37℃ CO2培养箱中培养4-6小时后更换以上预热的培养基,继续培养18～48小时。
5. 如果要筛选稳定细胞株，则在转染24小时后将细胞按照1:10或更高的比例接种到新鲜培养基中，第二天加 入选择性培养基进行筛选。
质粒DNA转染的优化 为达到最高的转染效率和降低细胞毒性的影响，可以对DNA和ProfeLipo2000的比例以及细胞密度进行优化，一 般在1:0.5~1:5的范围内优化DNA (µg)和ProfeLipo2000 (µl) 的比例。
不同细胞培养板中转染时培养基、核酸及ProfeLipo2000用量
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细胞培养板 |
每孔面积 |
培养基用量 |
DNA转染 |
siRNA转染 |
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铺板培养基用量 |
稀释培养基用量 |
DNA |
转染试剂用量 |
RNA |
转染试剂用量 |
||
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96-well |
0.3 cm2 |
100 uL |
2 × 25 µl |
0.1 µg |
0.2～0.5 µl |
5 pmol |
0.2～0.25 µl |
|
24-well |
2 cm2 |
500 uL |
2 × 50 µl |
0.5 µg |
0.6～2.5 µl |
20 pmol |
0.8～1.0 µl |
|
12-well |
4 cm2 |
1 mL |
2 × 100 µl |
1 µg |
2～4.5 µl |
40 pmol |
1.5～2.0 µl |
|
6-well |
10 cm2 |
2 mL |
2 × 250 µl |
2～4 µg |
5～10 µl |
100 pmol |
4～5 µl |
|
60-mm |
20 cm2 |
5 mL |
2 × 0.5 ml |
4～8 µg |
10～20 µl |
200 pmol |
7～10 µl |
|
10-cm |
60 cm2 |
15 mL |
2 × 1.5 ml |
12～24 µg |
30～60 µl |
600 pmol |
25～30 µl |
细胞转染注意事项：
细胞/DNA/siRNA每次都不同，建议每次转染一定要进行预实验来摸索最佳条件，尤其是转染试剂的最佳用量！
- 转染试验失败原因：DNA/siRNA，转染试剂和细胞。转染效率低要先排除一下是否是siRNA的问题，如果siRNA无效，换再好的转染试剂也没意义，可以用带荧光标记的control siRNA做一下看看，转进去的话会有荧光的。确实转染效率低，可以考虑换转染试剂；毒性大则要减少转染试剂的用量。
- 细胞的种类和状态影响较大：转染时细胞必须处于良好生长状态，转染时细胞的密度一般铺板率在达到70—80%最好（此时细胞处于对数生长期）；
- 如果是贴壁细胞，应保证贴壁在12～24小时在进行转染，否则细胞转染容易脱壁。对于贴壁生长细胞，一般要求在转染前一日，必须应用胰酶处理成单细胞悬液，重新接种于培养皿或瓶，转染当日的细胞密度以70-90%（贴壁细胞）或2×106-4×106细胞/ml（悬浮细胞）为宜，最好在转染前4h换一次新鲜培养液。
- 质粒的大小，质量和用量对转染效率很关键。
- 转染时注意脂质体和用量，过量的话对细胞毒性大也容易失败。
- 转染作用6小时一定记得要换含血清的培养基
- 培养基以及洗涤细胞和稀释用的培养基要无血清、无双抗。
- 转染试剂对个别细胞可能有一定毒性，在转染过程由于提高细胞的通透性因而不能在培养答基中添加抗生素。
- 高纯度的DNA或RNA可获得较高的转染效率！用于转染的质粒DNA必须无蛋白质，无RNA和其他化学物质的污染，OD260/280比值应在1.8以上。血清中含有大量的蛋白质，在转染过程中，带负电的蛋白质可能干扰阳离子脂质体对核酸的吸附，影响转染效率。另外，使用脂质体等转染试剂时，由于含血清转染会将血清中的蛋白带入细胞，引发细胞毒性，导致转染效率降低，故用无血清培养基转染效果更好！
- 培养基中的血清：在开始准备DNA和转染试剂稀释液时要使用无血清的培养基，因为血清会影响复合物的形成。其实，只要在DNA-转染试剂复合物形成时不含血清，在转染过程中是可以使用血清的。
- 培养基中的抗生素：抗生素是影响转染的培养基添加物。这些抗生素一般对于真核细胞无毒，但阳离子脂质体试剂增加了细胞的通透性，使抗生素可以进入细胞。这降低了细胞的活性，导致转染效率降低。
- 一般在转染24-48h，靶基因即在细胞内表达。根据不同的实验目的，24-48h后即可进行靶基因表达的检测实验。
- 如若建立稳定的细胞系，则可对靶细胞进行筛选，根据不同基因载体中所含有的抗性标志选用相应的药物，常用的真核表达基因载体的标志物有潮霉素和新霉素等。
- 建议设置阳性对照和阴性对照。
常见细胞的转染效率（荧光显微镜检测数据仅供参考，实验条件不同转染效率会有差别）
|
细胞种类 |
HEK293 |
293T |
293F |
HCT 116 |
WRL -68 |
HepG2 |
NIH/3T3 |
THP-1 |
Hela |
MCF-7 |
CV-1 |
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转染效率 |
99% |
99% |
99% |
80% |
80% |
~80% |
~80% |
>50% |
94% |
>80% |
70% |
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细胞种类 |
CHO-S |
CHO |
COS-7L |
Chok1 |
Hep3B |
C2C12 |
Neuro-2a |
HUVEC |
MDCK |
Hep2C |
WEHI |
|
转染效率 |
97% |
96% |
99% |
50% |
80% |
>80% |
>70% |
>80% |
60% |
>80% |
>80% |
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细胞种类 |
HT-1080 |
SKBR3 |
Vero |
MEF |
BE(2)C |
A549 |
L929 |
HO1980 |
Calu1 |
TS cell |
B50 |
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转染效率 |
81% |
50% |
85% |
50% |
77% |
>80% |
>70% |
>60% |
>70% |
>60% |
>70% |
转染效率的测定方法
1)实时定量PCR检测;
2)Western Blot检测;
3)流式细胞术
4)荧光显微镜观察: 转染含有荧光蛋白基因质粒DNA，通过荧光显微镜观察荧光的强弱以及荧光的效率。
Lipo转染试剂用于不同细胞转染时用量参考（以96孔板为例）
常见问题
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